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异丙酚麻醉影响海马去甲基肾上腺素释放的微透析研究

时间:2010-08-24 11:31:23  来源:  作者:

Effects of Propofol Anesthesia on Noradrenaline Release in Rat Hippocampus in Microdialysis Study. <?xml:namespace prefix = o ns = "urn:schemas-microsoft-com:office:office" />

Abstract

Objective: To observe the influence of propofol anesthesia on the release of noradrenaline (NA) and α2 NA receptors in rat hippocampus in order to identify the mechanisms of central noradrenaline to generate propofol anesthesia.
 Methods: Nine adult male SD rats were randomly divided into 3 groups: group A(propofol),group B( clonidine + propofol) and group C (yohimbine +  propofol). The in vivo microdialysis technique was used to measure the concentration of NA on the extracellular liquid of hippocampus. Propofol was infused intravenously (IV) first at a rate of 10 mg/(kg•h) for 45 min and then at a rate of 60 mg/(kg•h) for 45 min in group A. 0.5 mg/kg of clonidine and 0.5 mg/kg of yohimbine were given intraperitoneally in group B and C respectively, and propofol was infused IV at a rate just as same as group A.
 Results: The NA level in hippocampus decreased during the infusion of propofol at a rate of 60 mg/(kg•h) (from 0.18±0.04 μg to 0.13±0.02 μg), but it reduced more by the usage of clonidine (from 0.14±0.04 μg to 0.07±0.04 μg); and increased with using yohimbine (from 0.12±0.03 μg to 0.14±0.02 μg)(P<0.05).
 Conclusion: The mechanism of noradrenaline in hippocampus may play part role in generating the state of anesthesia and in modulating the depth of propofol anesthesia.

 
Key words: Propofol; Hippocampus; Noradrenaline; Brain Microdialysis

近年来,随着脑内微透析技术和微量分析化学等技术在麻醉领域中的应用,发现去甲基肾上腺素( NA)所介入的中枢肾上线腺素能传递系统,可能是全麻药的重要靶区。大量资料表明,中枢性 NA的释放与动物的自然睡眠、觉醒过程以及麻醉状态的产生之间存在密切相关。Angel强调中枢性 NA系统在很多情况下参与了麻醉机制[1]。当用神经毒物质6 hydroxydopamine(6 OHDA)选择性地破坏刚出生大鼠桥脑蓝斑( LC)  的NA系统后,戊巴比妥麻醉的深度明显加深、持续时间明显延长[2]。海马是由 LC发出的上行投射系统NA背侧束在中枢神经系统支配的主要区域之一,有文章报道镇静-催眠药咪唑安定可增加海马等组织 NA的释放。异丙酚现已广泛用于全麻诱导和维持,但对其作用机制尚不完全明了。有人认为异丙酚可能与CNS儿茶酚胺类神经介质如多巴胺受体[3],或 5 羟色胺受体[4]存在相互作用;但对于它是否影晌CNS 的NA释放,目前还未见报道。探讨CNS某些脑区细胞外液NA的浓度与异丙酚麻醉的关系,必然要涉及到中枢α2 肾上腺素能(NA)受体的作用。本研究旨在采用脑内微透析技术观察大鼠的异丙酚麻醉状态,及其在NA特定激动剂和拮抗剂的作用下,与CNS海马NA的释放以及α2 NA受体之间的相互关系。

资 料 与 方 法<?xml:namespace prefix = o ns = "urn:schemas-microsoft-com:office:office" />

一、仪器设备 
  瑞士Carnegie Medicine公司微透析探头(CMA/10,膜长3 mm,内径400 μm,外径500 μm,允许透过最大分子量的界限值为20,000道尔);微量灌流泵(CMA/100);冷冻式样品收集器(CMA/170);温度控制器(CMA/150);美国BAS公司脑立体定位仪(STA 4000);美国Beckman高效液相色谱分析仪(125双元梯度泵、反相色谱柱:250×4.6 mm,粒径5μm);Ultrasphere ODS C 18分离柱;美国BAS LC 44 1000 F 电化学检测器。

  二、药品及试剂 
  异丙酚(捷利康产品);灌流液(自制的人工脑脊液:NaCl 147 mM、KCl 4 mM、CaCl2 2.3 mM、VitC 1mM、pH 7.4);NA标准品;可乐定;育亨宾(均为Sigma产品);十二烷基磺酸钠;乙酸钠;柠檬酸;EDTA;盐酸(均为国产分析纯试剂);实验超纯水(中国医学科学院基础研究所产品)。

  三、外科操作和微透析实验  
  1、SD雄性大鼠9只(体重220~250 g),实验全过程中所有动物处于12:12 h的生活节律下自由进食进饮,室温为23℃。每只动物于腹腔注射水合氯醛300 mg/kg麻醉后,将其头部固定在脑立体定位仪上,根据大鼠脑立体定位图谱[5],将微透析探头植入右侧海马内(以前囟为零点,向后5.3 mm,向右5.0 mm,向下6 mm)。大鼠自主呼吸室内空气。所有切口、双侧耳道及静脉穿刺点均用0.25%布比卡因局部浸润麻醉。
  2、将动物分为三组,每组三只。A组经微透析管用透析泵以2.0 μg/min的速度持续灌注10 μM/L的人工脑脊液。最初的透析液系反映微透析探头引起脑组织损伤而释放的NA,故予以废弃;以后每15 min收集一次微透析样品,置入含0.02M 5μl冰醋酸的Eppendorf管中;平衡60 min后收集45 min的3个基础透析样品,取其平均值作为麻醉前基础值。然后用微量泵分别以10 mg/(kg•h)和60 mg/(kg•h)的速度依次静注异丙酚各45 min,停药后直至动物清醒。B组(可乐定+异丙酚组)和C组(育亨宾+异丙酚组)在输注异丙酚(方法与A组相同)的同时,分别经腹腔内注射可乐定0.5 mg/kg和盐酸育亨宾0.5 mg/kg。分别比较麻醉前、麻醉中及苏醒期的NA值,并在实验全程密切观察动物的苏醒时间。
  3、所收集的NA透析样品立即用高效液相色谱仪-电化学检测仪(HPLC LC)作定量分析。样品直接注射到一个持续温度25 ℃的ODS 18逆转相柱内。流动相的组成为:50 mM乙酸钠、19 mM柠檬酸、3 mM十二烷基磺酸钠、0.2 mM EDTA Na2、1 mM二正丁胺,用5%乙晴水溶液溶解,pH 4.3;流速:1 ml/min。LC 4C安培型电化学检测器:白金工作电极对Ag/AgCl参比电极的电位设置为 +0.65 V,量程为10 μA。

  4、每次实验结束时,用戊巴比妥钠深麻醉处死动物,用10%福尔马林固定大鼠脑组织,做冷冻病理切片以确定微透析探头的透析部位。
  5、统计学分析  各组异丙酚注射前、后NA的均值比较用方差分析检验,均采用SPSS统计软件分析。P<0.05表示有显著性差异。

结 果

1、经组织学验证,本研究所安置的探头均在海马组织内
2、图1示A组的NA分别在基础值异丙酚10 mg/(kg•h)注速和60 mg/(kg•h)注速以及麻醉恢复期时的释放情况。海马NA的平均基础值为0.18±0.04 μg;异丙酚60 mg/(kg•h)注速时的NA为0.13±0.02μg,后者明显降低(P<0.05)与异丙酚10 mg/(kg•h)注速时的NA相比也呈下降趋势。
  3、图2示B组海马NA释放情况。异丙酚60 mg/(kg•h)注速时海马NA为0.07±0.04 μg,与基础值(0.14±0.04 μg)相比明显降低(P<0.05)。
  4、图3示C组海马NA释放情况。育亨宾 + 异丙酚60 mg/(kg•h)注速时海马NA为0.14±0.02 μg,与育亨宾 + 异丙酚10 mg/(kg•h)注速时(0.13±0.01 μg)和基础值(0.12±0.03 μg)相比,呈现逐渐上升趋势,有统计学差异(P<0.05)。

讨 论<?xml:namespace prefix = o ns = "urn:schemas-microsoft-com:office:office" />

  一、异丙酚麻醉与中枢性NA的释放  
  1、用微透析方法直接在活体动物脑组织内动态观测海马NA含量,并探讨与异丙酚之间的关系,目前尚属首例。笔者发现海马细胞外液的NA浓度不仅在异丙酚麻醉时降低、在麻醉恢复时升高,且随异丙酚浓度的增加而降低。近年研究证实,大脑皮层[6]、网状结构、下丘脑[7]等脑区的NA释放,以及其细胞外液浓度的逆转,与意识和麻醉状态的产生存在着密切相关性。某些脑区细胞外液NA的浓度与氟烷麻醉时的MAC需求量呈现正相关关系。此外,氟烷和七氟醚全麻期间NA的降低和全麻恢复期间NA释放的增加,与下丘脑后部NA神经元的兴奋性以及NA神经传导的速度密切相关。静脉麻醉药吗啡可明显抑制电刺激引起的视中区NA的释放,并可被预先给予的等量纳络酮所完全阻断。
  2、桥脑的LC含有脑干中几乎50%的NA神经元,在全麻机制中具有重要地位。它发出的NA能神经纤维与觉醒、睡眠及全麻状态的产生存在着重要关系,也是α2 NA受体激动剂的主要作用部位之一[8]。如果用电解方式损坏由LC发出的NA背侧传导束,动物同时会出现慢波睡眠和奇异性睡眠,此时,蓝斑核 NA神经元的自发性放电频率最低;相反,如果电刺激猫LC,大脑皮层的NA 释放增多,此时动物的体征和皮层EEG的表现均呈现清醒状态,LC NA神经元的自发性放电频率则达到最高峰。慢波睡眠不仅出现在自然睡眠期,还可出现在一些全麻药引起的意识丧失阶段。因此,人们已重视海马等其它中枢性NA神经元结构与LC之间的关系。首先海马和LC具有解剖部位上的联系,即海马的部分NA神经纤维来自于LC发出的背侧束NA神经纤维;其次,Foote观察到构成海马NA投射纤维的LC受到刺激而被激活时,神经元的放电频率要比在嗜唾和睡眠状态时显著增快;而吸入麻醉药如氟烷可降低这种刺激所引起的海马NA的释放。
  3、任何麻醉状态的产生都不是由单一神经递质体系所完成[9]。有报道认为异丙酚增强γ 氨基丁酸(GABA)受体的抑制作用。然而至今尚未能确定异丙酚麻醉的作用点。异丙酚麻醉所导致的海马儿茶酚胺类物质的改变,是否是异丙酚麻醉的共有机制,还有待于进一步的研究。 

参考文献
1.  Angel A.Progress in anesthetic mechanism.Editted by the research group of anesthetic mechanism in Japan 1995.509~519.
2.  Mason. Brain noradrenaline and anaesthesia:behavioral and electrophysiological evidence. Neuroscience 1982,10:177~185.
3.  Appadu BL. Does propofol interact with D2 dopamine receptors? Anesth Analg 1994,79:191~192.
4.  Borgeat A, et al. Adjuvant propofol enables better control of nausea and emesis secondary to chemotherapy for breast cancer. Can J Anaesth 1994:1117.
5.  包新民.大鼠脑立体定位图谱.北京:人民卫生出版社 1985.
6.  Nakane H,et al. Stress?induced norepinephrine release in the rat prefrontal cortex measured by microdialysis. Am J Physiol 1994,267:1559~1566.
7.  Shimokawa A.Effects of anesthetics on norepinephrine release in the hypothalamic paraventricular nucleus region of awake rats. Neurosci Lett 1998,244:21~4.
8.  Angel A. Central neuronal pathways and the process of anaesthesia. Br J Anaesth 1993,71:148~163.
9.  Lidic R,et al. Sleep neurobiology:relevance for mechanistic studies of anaesthesia. Br J Anaesth 1994,72:506~508.
10.  Richards MJ,et al. Total iv anesthesia with propofol and alfentanil: dose requirements for propofol and the effect of premedication with clonidine. Br J Anaesth 1990,65:157.
11.  Aanta RE,et al. Dexmedetomidine premedication for minor gynecologic surgery.Anesth Analg 1990,70:402~413.
12.  DeSarro GB,et al. Evidence that locus coeruleus is the site where clonidine and drugs acting at α1-and α2- adrenoceptors affect sleep and arousal mechanisms. Br J Pharmac 1987,90:675~685.
13.  Madison DV,et al.Actions of noradrenaline recorded intracellularly in rat hippocampal CA1 pyramidal neurones,in vitro. J Physiol 1986,372:221~244.
14.  Thornton C,et al. The auditory evoked responses as an indicator of awareness. Br J Anaesth 1989,63:113.
15.  Quasha AL,et al. Minimum alveolar concentration of Ⅰ?653 and isoflurane in pigs: Definition of a supramaximal stimulus. Anesth Analg 1980,53:315~334.
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